页数：80页文件大小：1,005.0 KB来源： 微生物学ppt课件
本课件讲解微生物的生长与纯培养，先区分生长、繁殖与发育的概念，再介绍直接计数、比浊、平板菌落计数等测定方法，进而分析延滞期、指数期、稳定期与衰亡期的生长规律，最后讲无菌技术与分离纯化。
第四章微生物的生长和纯培养生长与繁殖的概念生长——微生物细胞吸收营养物质，进行新陈代谢，当同化作用>异化作用时，生命个体的重量和体积不断增大的过程。
繁殖——生命个体生长到一定阶段，通过特定方式产生新的生命个体，即引起生命个体数量增加的生物学过程。
发育——从生长到繁殖，是生物的构造和机能从简单到复杂、从量变到质变的发展变化过程，这一过程称为发育。
个体生长——微生物细胞个体吸收营养物质，进行新陈代谢，原生质与细胞组分的增加为个体生长。
群体生长——群体中个体数目的增加。
可以用重量、体积、密度或浓度来衡量。
（由于微生物的个体极小，所以常用群体生长来反映个体生长的状况）个体生长个体繁殖群体生长群体生长=个体生长+个体繁殖
3.平板菌落计数法技术要求：样品充分混匀，操作熟练快速（15~20min完成操作），严格无菌操作；
注意事项：每一支吸管只能用于一个稀释度，样品混匀处理，倾注平板时的培养基温度；
适用范围：中温、好氧和兼性厌氧、能在营养琼脂上生长的微生物；
误差：多次稀释造成的误差是主要来源，其次还有由于样品内菌体分布不均匀、以及不当操作。
4、干重测定法将一定量的菌液中的菌体通过离心或过滤分离出来，然后烘干(干燥温度可采用105℃、100℃或80℃)、称重。
一般干重为湿重的10%—20%，而一个细菌细胞一般重约10-12—10-13g。
该法适合菌浓较高的样品。
如大肠杆菌一个细胞一般重约10–12~10–13g，液体培养物中细胞浓度达到2×109个/ml时，100ml培养物可得10~90mg干重的细胞。
5、菌丝长度测定法该法适用于对丝状真菌生长长度的测定。
方法：将真菌接种在固体培养基的平皿中央，定时测定菌落的直径或面积，直到菌落覆盖整个平皿。
缺点：不能反映菌丝的纵向生长，不能计算菌落的厚度和培养集中的菌丝。
接种量也能影响结果，不能反映菌丝的总量。
也可用U型管培养法，该法方便不易污染，但通气不良。
6、细胞堆积体积测定法方法：将细胞悬浮液装入毛细沉淀管内，离心，根据堆积体积计算含菌量。
该法快速、简便，培养液中如有其他固体颗粒，则误差较大。
也可以用有刻度的离心管离心，通过所得的沉淀体积推算出细胞的质量。
7、电子计数器法方法：在计数器中放有电解质及两个电极，将电极一端放入带微孔的小管，通电抽真空，使含有菌体的电解质从小孔进入管内。
当细胞通过小孔时，电阻增大，电阻增大会引起脉冲变化，则每个细胞通过时均被记录下来。
因样品的体积已知，故可以计算菌体的浓度，同时菌体的大小与电阻的大小成正比。
该方法方便、快捷，但不能测定含有颗粒的菌液，对链状和丝状菌无效。
8、液体稀释法
9、薄膜过滤计数法常用该法测定含菌量较少的空气和水中的微生物数目。
将定量的样品通过薄膜（硝化纤维素薄膜、醋酸纤维薄膜）过滤，菌体被阻留在滤膜上，取下滤膜进行培养，然后计算菌落数，可求出样品中所含菌数。
10、涂片染色法应用：可同时计数不同微生物的菌数，适于土壤、牛奶中细菌计数。
方法：用镜台测微尺计算出视野面积；
取0.1ml菌液涂于1cm2面积上，计数后代入公式：每ml原菌液含菌数=视野中平均菌数×涂布面积/视野面积×100×稀释倍数
测含氮量蛋白质是细胞的主要物质，含量稳定，而氮是蛋白质的主要成分，通过测含氮量就可推知微生物的浓度。
一般细菌含氮量为干重的12.5%，酵母菌为7.5%，霉菌为6.0%，根据一定体积培养液中的含氮量再乘以6.25，就可测得粗蛋白的含量。
含碳、磷、DNA、RNA、耗氧量、消耗底物量、产二氧化碳、产酸、产热、粘度等，都可用于生长量的测定。
第二节微生物的生长规律由于微生物细胞极其微小，研究其个体生长存在着技术上的困难。
同步生长的概念：一个细胞群体中各个细胞都在同一时间进行分裂的状态，称为同步生长，进行同步分裂的细胞称为同步细胞。
同步细胞群体在任何一时刻都处在细胞周期的同一相，彼此间形态、生化特征都很一致，因而是细胞学、生理学和生物化学等研究的良好材料。
一、单细胞微生物的群体生长曲线单细胞微生物主要包括细菌和酵母菌，其群体生长是以群体中细胞数量的增加来表示的，由一个细胞分裂成为两个细胞的时间间隔称为世代，一个世代所需的时间就是代时，代时也就是群体细胞数目扩大一倍所需时间，有时也称为倍增时间。
单位时间内繁殖的代数成为生长速率。
图中表示的是一个细胞经过若干代分裂后的情况。
从图可见，每经过一个代时，细胞数目就增加一倍，呈指数增加，因而被称为指数生长，这就是单细胞群体生长的特征。
以细菌为例介绍单细胞微生物群体生长规律，其结论也基本适用于酵母菌。
生长曲线代表了细菌在新的环境中从开始生长、分裂直至死亡的整个动态变化过程。
每种细菌都有各自的典型生长曲线，但它们的生长过程却有着共同的规律性。
一般可以将生长曲线划分为四个时期。
生长曲线：把少量的细菌接种到合适的液体培养基中，在适宜的条件下培养，定时取样测定单位体积的细胞数，并绘制所得的曲线：以细菌细胞数目的对数作纵坐标，以培养时间为横坐标，得出细菌在生长过程中的曲线图。
根据生长曲线的变化规律，可分为延迟期、对数生长期、稳定期、衰亡期四个阶段。
微生物的生长规律延滞期对数生长期稳定期衰亡期单细胞微生物的典型生长曲线细胞数目的对数
微生物的生长曲线
将少量单细胞的纯培养，接种到一恒定容积的新鲜液体培养基中，在适宜条件下培养，每隔一定时间取样，测菌细胞数目。
以培养时间为横坐标，以细菌增长数目的对数为纵坐标，绘制所得的曲线。
1、延迟期是微生物细胞进入新环境的适应时期，也是细胞调整其大分子和小分子物质的组成（包括酶和细胞结构成分）又称为调整期。
微生物延迟期的长短以细菌、酵母较短，霉菌次之，放线菌最长。
其它名称：停滞期、调整期、适应期。
影响延滞期长短的因素菌种：繁殖速度较快的菌种的延迟期一般较短。
接种物菌龄：用对数生长期的菌种接种时，其延迟期较短，甚至检查不到延迟期。
接种量：一般来说，接种量增大可缩短甚至消除延迟期（发酵工业上一般采用1/10的接种量）。
培养基成分：在营养成分丰富的天然培养基上生长的延滞期比在合成培养基上生长时短；
接种后培养基成分有较大变化时，会使延滞期加长，所以发酵工业上尽量使发酵培养基的成分与种子培养基接近。
2、对数生长期代时以G表示，生长速率已R表示，设t1时刻的菌数为N1，
经过n次分裂后，t2时刻的菌数为N2
例如：一培养液中微生物数目由开始的12，000（B），经4h（t）后增加到49，000，000（b），这样，n＝(lg4.9×107－lg1.2×104）÷0.301＝12借助于n和t，还可以计算出不同培养条件下的代时G，G＝t / n在本例中，G＝4×60 / 12＝20min∴该种微生物的代时为20分钟。
在4小时内共繁殖了12代。
代时能够反应细菌的生长速率，代时短，生长速率快，代时长，生长速率慢。
在很多微生物学研究中常常要了解微生物的代时。
代时在不同种微生物中的变化很大，多数微生物的代时为1~3h,然而有些快速生长的微生物的代时还不到10min,而另一些微生物的代时却可长达几小时或几天；
另外，同一种微生物，在不同的生长条件下其代时的长短也不同；
但是，在一定条件下，每一种微生物的代时是恒定的，因此它是微生物菌种的一个重要特征。
一些细菌的代时菌名培养基培养温度代时E. coli（大肠杆菌）肉汤37℃ 17minE. coli牛奶37 12.5Enterobacter aerogenes（产气肠细菌）肉汤或牛奶37 16~18E. aerogenes组合37 29~44B.Cereus（蜡状芽孢杆菌）肉汤30 18B. thermophilus（嗜热芽孢杆菌）肉汤55 18.3Lactobacillus acidophilus（嗜酸乳杆菌）牛奶37 66~87Streptococcus lactis（乳酸链球菌）牛奶37 26S. lactis乳糖肉汤37 48Salmonella typhi（伤寒沙门氏菌）肉汤37 23.5Azotobacter chroococcum（褐球固氮菌）葡萄糖25 344~46Mycobacterium tuberculosis（结核分枝杆菌）组合37 792~93Nitrobacter agilis（活跃硝化杆菌）组合27 1200
不同温度下的代时温度对微生物的代时有明显影响：E. Coli在不同温度下的代时温度（℃）代时（分）温度（℃）代时（分）10860352215120371720904017.525404520302947.577
营养物浓度与对数期生长速率和产量作用方式：影响微生物的生长速率和总生长量。
生长限制因子：凡是处于较低浓度范围内，可影响生长速率和菌体产量的营养物就称生长限制因子。
8.0mg/ml6.0mg/ml4.0mg/ml2.0mg/ml1.0mg/ml0.5mg/ml0.2mg/ml0.1mg/ml只最大收获量受影响生长速度和最大收获量受影响时间
生长产量常数（Y，或生长得率）：概念：表示微生物对基质利用效率的高低Y=菌体干重/消耗营养物质的浓度根据产量常数可确定微生物对营养物质的需要量。
如：Y=0.5，表示要得到5g菌体，需某营养物（葡萄糖）10g。
产生原因：生长条件的进一步恶化，使细胞内的分解代谢大大超过合成代谢，继而导致菌体的死亡。
微生物生长与代谢产物形成的关系：微生物发酵形成产物的过程与微生物细胞生长的过程并不总是一致的。
一般认为：初级代谢是给予生物能量和生成中间产物的过程，初级代谢产物的形成往往与微生物细胞的形成过程同步，微生物生长的稳定期是这些产物的最佳收获时机；
主要的生长参数迟缓时间：实际达到对数生长期所需时间与理想条件下达到对数期所需时间之差。
延缓生长量反映了迟缓期给细胞物质的工业化生产造成的损失。
比生长率：表示生长速度与生长基质浓度之间的关系，当营养物质浓度很低时，比生长率与营养物质浓度成正比。
总生长量：通过培养获得的微生物总量与原来接种的微生物量之差值。
产量常数：总生长量与消耗基质总量之比。
将灭好菌的琼脂培养基倒入培养皿中，凝固后用接种针取少量的需分离菌，在培养基的表面上进行划线，经培养后形成菌落。
菌落在划线开始处较密集，在划线的结束处少，当有单个孤立的菌落时，就达到分离的目的。
划线的方法有：连续划线法、扇形划线法、方格划线法和平行划线法。
连续划线划线分离后平板上显示的菌落照片
（1）液体稀释法首先将待分离的样品进行连续稀释，目的是得到高度稀释的效果，使一支试管中分配不到一个微生物。
如果经过稀释后的大多数试管中没有微生物生长，那么有微生物生长的试管得到的培养物可能就是由一个微生物个体繁殖而来的纯培养物。
这种方法适合于细胞较大的微生物。
（2）稀释倒平板法首先将待分离的样品进行连续稀释，取一定稀释度的样品涂布平板或者取一定稀释度的样品和熔化的营养琼脂混合（对于热敏感菌不适用），培养到平板上长出单一的菌落。
对于涂布平板的样品菌落通常仅张在平板的表面，对于与营养琼脂混合的样品菌落通常出现在平板的表面和内部。
（3）涂布平板法将经过稀释的样品滴加入已制好并灭好菌的培养皿表面，用灭好菌的涂布棒将菌液均匀的涂抹在整个平板上，经培养长出单一菌落。
具体分为两种方法：将0.1ml样品加入固体培养基表面，用无菌涂布棒均匀涂抹进行培养（适用于某些严格好氧菌）或者将样品加入到无菌的培养皿中，加入45~50℃固体培养基迅速混匀进行培养。
3、单细胞（单孢子）挑取法采用显微分离法从混杂群体中直接分离单个细胞或单个个体进行培养以获得纯培养的方法。
该方法要在显微镜下进行。
毛细管法：用毛细管提取微生物个体，适合于较大微生物。
显微操作仪：用显微针、钩、环等挑取单个细胞或孢子以获得纯培养。
小液滴法：将经过适当稀释后的样品制成小液滴，在显微镜下选取只含一个细胞的液滴来进行纯培养物的分离。
4、选择性培养分离法为了从混杂的微生物群体中分离出某种微生物，可以根据该微生物的特点，包括营养、生理、生长条件等，采用选择培养的方法进行分离。
利用选择培养基进行直接分离富集培养
厌氧培养是通过隔绝空气或驱除氧气的方法来实现的。
实验室培养时，可将菌种接种到固体、半固体培养基的深层进行培养，同时加入还原剂；
也可将厌氧微生物放入真空干燥器，抽出空气，并充入氮气或氮气和二氧化碳的混合气体。
2、分批培养和连续培养分批培养：将微生物置于一定容积的、定量的培养基中培养，培养基一次性加入，不再补充和更换，最后一次性收获。
分批培养的过程中菌体、各种代谢产物的数目与营养物的数目呈负相关性。
当微生物生长及基质变化达到一定时，菌体生长则会停止。
在发酵工业中可用中间补料或连续流加物料，使培养基中营养物质的浓度保持在适合菌体生长和有利于菌体积累代谢产物的环境中。
连续培养：在微生物培养的过程中，不断地供给新鲜的营养物质，同时排除含菌体及代谢产物的发酵液，让培养的微生物长时间地处于对数生长期，以利于微生物的增殖速度和代谢活性处于某种稳定状态。
连续培养理论基础：由于对典型生长曲线中稳定期到来原因的认识，采取相应有效措施推迟其来临，从而发展出现在的连续培养技术。
连续培养原理当微生物在单批培养方式下生长达到对数期后期时，
一方面以一定的速度流进新鲜培养基并搅拌，另一方面以溢流方式流出培养液，
使培养物达到动态平衡，其中的微生物就能长期保持对数期的平衡生长状态和稳定的生长速率。
连续培养和单批培养的比较单批培养恒浊法恒化法单批培养连续培养时间连续流入新鲜培养液lg细胞数（个/ml）连续培养
连续培养器连续培养器按控制方式分按培养器的级数分按细胞状态分按用途分内控制（控制菌体密度）：恒浊器外控制（控制培养液流速、以控制生长速率）：恒化器单级连续培养器多级连续培养器一般连续培养器固定化细胞连续培养器实验室科研用：连续培养器发酵生产用：连续发酵罐
连续培养技术——恒化连续培养概念：以恒定流速使营养物质浓度恒定而保持细菌生长速率恒定的方法。
原理：通过控制某一种营养物浓度（如碳、氮源、生长因子等），使其始终成为生长限制因子，而达到控制培养液流速保持不变，并使微生物始终在低于其最高生长速率条件下进行生长繁殖。
特点：维持营养成分的亚适量，控制微生物生长速率。
菌体生长速率恒定，菌体均一、密度稳定，产量低于最高菌体产量。
应用范围：实验室科学研究。
恒化器
连续培养技术——恒浊培养概念：通过调节培养基流速，使培养液浊度保持恒定的连续培养方法。
原理：通过调节新鲜培养基流入的速度和培养物流出的速度来维持菌浓度不变，即浊度不变。
主要采用恒浊器，当浊度高时，使新鲜培养基的流速加快，浊度降低，则减慢培养基的流速。
连续培养技术——恒浊培养特点：基质过量，微生物始终以最高速率进行生长，并可在允许范围内控制不同的菌体密度；
但工艺复杂，烦琐。
使用范围：用于生产大量菌体、生产与菌体生长相平行的某些代谢产物，如乳酸、乙醇等。
恒浊器与恒化器的比较应用范围产物生长速率培养基流速培养基控制对象装置生产为主大量菌体或与菌体形成相平行的产物最高不恒定无限制生长因子菌体密度（内控制）恒浊器实验室为主不同生长速率的菌体低于最高恒定有限制生长因子培养基流速（外控制）恒化器
连续发酵连续培养在生产上的应用，相对于单批发酵而言。
优点：高效，简化了操作了装料、灭菌、出料、清洗发酵罐等单元操作；
自控：便于利用各种仪表进行自动控制；
产品质量稳定节约大量动力、人力、水和蒸汽，且使水、汽、电的负荷均衡合理。
3、混菌培养两种或两种以上的微生物的培养。
通常是在发酵工业中用两种或两种以上的具有互补性质的菌种进行混合培养。
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