页数:5页文件大小:41.0 KB来源: 微生物学ppt课件
本实验课件说明紫外线诱变的剂量控制与操作步骤,给出实验流程图,并介绍利用药物平板筛选链霉素抗性突变株的方法与结果分析。
实验十一紫外诱变技术及抗药性突变菌株的筛选Ⅰ.紫外诱变技术一实验目的以紫外线处理细菌细胞为例,学习微生物诱变育种的基本技术。
了解紫外线对细菌细胞的作用。
二实验材料和用具菌株:大肠杆菌(Escherichiacoli)培养基:营养肉汤(nutrientbroth)固体和液体培养基生理盐水等器皿:10ml及1ml的移液管,无菌试管,无菌培养皿,无菌三角瓶(内有无菌的玻璃珠20~40粒),无菌漏斗(内有两层擦镜纸),无菌离心管,离心机,紫外诱变箱等。
三实验原理以微生物的自然变易作为基础的筛选菌种的机率并不很高。
因为自发突变率小,一个基因的自发突变率仅为10-6~10-10左右。
为了加大突变频率,可采用物理或化学的因素进行诱发突变。
物理因素中目前使用得最方便且十分有效是UV,UV诱变一般采用15w的紫外灭菌灯,其光谱比较集中在253.7nm处,这与DNA的吸收波长一致,可引起DNA分子结构发生变化,特别是嘧啶间形成胸腺嘧啶二聚体,从而引起菌种的遗传特性发生变易。
在生产和科研中可利用此法获得突变株。
四实验内容1、对出发菌株进行处理,制备单细胞悬液;
2、紫外线进行处理;
3、用平板菌落计数法测定致死率;
五操作步骤(一)出发菌株菌悬液的制备1.出发菌株移接新鲜斜面培养基,37℃培养16~24h;
2.将活化后的菌株接种于液体培养基,37℃110rpm振荡培养过夜(约16h),第二天,以20~30%接种量转接新鲜的营养肉汤培养基,继续培养2~4h;
3.取4ml培养液与5ml离心管中,10000rpm离心3~5min,弃去上清液,加4ml无菌生理盐水,重新悬浮菌体,再离心,弃去上清,重复上述步骤用生理盐水恢复成菌悬液;
4.将上述菌悬液倒入装有小玻璃珠的无菌三角瓶内,振荡20~30min,以打散细胞;
5.取诱变前的0.5ml菌悬液进行适当稀释分离,取三个合适的稀释度倾注肉汤平板,每一梯度倾注两皿,每皿加1ml菌液,37℃倒置培养24~36h,进行平板菌落计数。
(二)UV诱变1.将紫外灯打开,预热30min;
2.取直径6cm的无菌培养皿(含转子),加入菌悬液5ml,控制细胞密度为107~108个/ml;
3.将待处理的培养皿置于诱变箱内的磁力搅拌仪上,静止1分钟后开启磁力搅拌仪旋纽进行搅拌,然后打开皿盖,分别处理5s、10s、15s、30s、45s,照射完毕后先盖上皿盖,再关闭搅拌和紫外灯;
4.取0.5ml处理后的菌液进行适当稀释分离,取三个合适的稀释度倾注肉汤平板进行计数(避光培养)。
六实验结果对平板菌落进行计数,并计算死亡率。
死亡率照射前活菌数/ml照射后活菌数/ml100%照射前活菌数/ml
附录:实验流程图出发菌株↓斜面活化↓37℃,16~24hr振荡培养↓37℃,110rpm过夜翻接↓37℃,110rpm2~4hr取4ml离心收集菌体↓10000rpm,5min弃上清液↓悬浮沉淀于4ml无菌生理盐水离心↓10000rpm,5min弃上清液↓悬浮沉淀于4ml无菌生理盐水↓离心↓10000rpm,5min弃上清液↓悬浮沉淀于4ml无菌生理盐水↓玻璃珠振荡↓20~30min单细胞菌悬液→平板菌落计数↓UV诱变平板菌落计数
五实验内容1.用紫外线对细菌细胞进行诱变处理;
2.利用药物平板筛选抗性突变株;
六实验结果1.观察紫外诱变的结果;
2.计算大肠杆菌链霉素抗性的突变率;
自发突变率诱变前样品中Str抗性菌数100%诱变前活菌数突变率后培养以后样品中Str抗性菌数100%后培养以后样品中的活菌数七思考题1.为什么在诱变前要把菌悬液打散?
2.试述紫外线诱变的作用机理及其在具体操作中应注意的问题。
3.简述后培养的目的及注意事项。
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