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03 第三章 细胞生物学研究方法.ppt

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本课件系统介绍光学显微镜、电子显微镜与显微操作技术,涵盖细胞化学、免疫荧光、原位杂交与PCR等分子生物学技术,以及细胞分离、流式分选、细胞培养与细胞杂交等常用方法,并说明各类技术的适用范围。

第三章 细胞生物学研究方法章节封面页,涵盖显微技术、生物化学与分子生物学技术、细胞分离技术、细胞培养与细胞杂交等内容
细胞生物学研究方法内容提要,列出显微技术、生物化学与分子生物学技术、细胞分离技术、细胞培养与细胞杂交等本章安排
第一节 显微技术章节标题页,涵盖光学显微镜、电子显微镜、显微操作技术等内容
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第1页:第三章 细胞生物学研究方法

第三章 细胞生物学研究方法

本页为第三章 细胞生物学研究方法的章节封面,标示本章主题与内容安排。

第2页:细胞生物学研究方法内容提要

第三章 细胞生物学研究方法

  • 第一节显微技术
  • 一、光学显微镜
  • 二、电子显微镜
  • 三、显微操作技术
  • 第二节生物化学与分子生物学技术
  • 第三节细胞分离技术
  • 第四节细胞培养与细胞杂交

第3页:第一节 显微技术

第一节 显微技术

光学显微镜
以可见光(或紫外线)为光源。
电子显微镜
以电子束为光源。

第4页:一、光学显微镜

一、光学显微镜

第5页:(一)普通光学显微镜

(一)普通光学显微镜

  • 1. 构成:
  • ①照明系统
  • ②光学放大系统
  • ③机械装置
  • 2. 原理:经物镜形成倒立实像,经目镜进一步放大成像。

第6页:

第7页:

第8页:3.分辨力

3.分辨力

  • R=0.61λ/N.A.
    • 其中λ为入射光线波长;N.A.为镜口率=nsinα/2,n=介质折射率;α=镜口角(样品对物镜镜口的张角)。
  • 思考:如何提高显微镜的分辨能力?

第9页:表一、几种介质的折射率

表一、几种介质的折射率

本页为课件中的表格原图,源文件未提取到表格数据,建议对照原课件图片补充表中内容。

第10页:显微镜的几个光学特点

显微镜的几个光学特点

  • 显微镜的几个光学特点:
    • 制作光学镜头所用的玻璃折射率为1.65~1.78,所用介质的折射率越接近玻璃的越好。
    • sin α/2的最大值必然小于1;介质为空气,镜口率一般为0.05~0.95;油镜头用香柏油为介质,镜口率可接近1.5。
    • 普通光线的波长为400~700nm,分辨力数值不会小于0.2μm,人眼的分辨力为0.2mm,因此显微镜的最大设计倍数为1000X。

第11页:(二)荧光显微镜

(二)荧光显微镜

  • 特点:光源为紫外线,波长较短,分辨力高于普通显微镜;
  • 有两个特殊的滤光片;
  • 照明方式通常为落射式。

第12页:

第13页:荧光显微镜(续)

  • Fluorescence image of epithelial cell, DNA in blue and Microtubules in green
  • 用于观察能激发出荧光的结构。用途:免疫荧光观察、基因定位、疾病诊断。

第14页:(三)激光共聚焦扫描显微境

(三)激光共聚焦扫描显微境

  • 用激光作光源,逐点、逐行、逐面快速扫描。
  • 能显示细胞样品的立体结构。
  • 分辨力是普通光学显微镜的3倍。
  • 用途类似荧光显微镜,但能扫描不同层次,形成立体图像。

第15页:显微镜共聚焦显微图像

显微镜共聚焦显微图像。本页为课件原图,图注为「laser confocal scanning microscope, LCSM」,对应显微技术部分的内容。

第16页:

第17页:细胞骨架微管黑色素细胞图像

细胞骨架微管黑色素细胞图像。本页为课件原图,图注为「LCSM Image of a Xenopus Melanophoremicrotubule cytoskeleton (green) and the nucleus (blue) http://www.itg.uiuc.edu/」,对应显微技术部分的内容。

第18页:(四)暗视野显微镜

(四)暗视野显微镜

  • 聚光镜中央有挡光片,照明光线不直接进人物镜,只允许被标本反射和衍射的光线进入物镜,因而视野的背景是黑的,物体的边缘是亮的。
  • 可观察4~200nm的微粒子,分辨率比普通显微镜高50倍。

第19页:(五)相差显微镜

(五)相差显微镜

  • 把透过标本的可见光的光程差变成振幅差,从而提高了各种结构间的对比度,使各种结构变得清晰可见。在构造上,相差显微镜有不同于普通光学显微镜两个特殊之处。1.环形光阑(annulardiaphragm):位于光源与聚光器之间。2.相位板(annularphaseplate):物镜中加了涂有氟化镁的相位板,可将直射光或衍射光的相位推迟1/4λ。

第20页:原理

原理

第21页:用途:观察未经染色的玻片标本示意图

用途:观察未经染色的玻片标本示意图。本页为课件原图,图注为「用途:观察未经染色的玻片标本」,对应显微技术部分的内容。

第22页:(六)偏光显微镜

(六)偏光显微镜

  • 用于检测具有双折射性的物质,如纤维丝、纺锤体、胶原、染色体等。
  • 光源前有偏振片(起偏器),使进入显微镜的光线为偏振光,镜筒中有检偏器(与起偏器方向垂直的偏振片)。
  • 载物台是可以旋转。淀粉

第23页:(七)微分干涉差显微镜

(七)微分干涉差显微镜

  • 1952年,Nomarski发明,利用两组平面偏振光的干涉,加强影像的明暗效果,能显示结构的三维立体投影。标本可略厚一点,折射率差别更大,故影像的立体感更强。

第24页:(八)倒置显微镜

(八)倒置显微镜

  • 物镜与照明系统颠倒,前者在载物台之下,后者在载物台之上,用于观察培养的活细胞,通常具有相差物镜,有的还具有荧光装置。

第25页:(九)当代显微镜的发展趋势

(九)当代显微镜的发展趋势

  • 采用组合方式,集普通光镜加相差、荧光、暗视野、DIC、摄影装置于一体。
  • 自动化与电子化。

第26页:二、电子显微镜

二、电子显微镜

第27页:1. 原理

  • 以电子束作光源,电磁场作透镜。电子束的波长短,并且波长与加速电压(通常50~120KV)的平方根成反比。
  • 由电子照明系统、电磁透镜成像系统、真空系统、记录系统、电源系统等5部分构成。
  • 分辨力0.2nm,放大倍数可达百万倍。
  • 用于观察超微结构(ultrastructure),即小于0.2µm、光学显微镜下无法看清的结构,又称亚显微结构(submicroscopicstructures)。

第28页:

第29页:透射电子显微镜示意图

透射电子显微镜示意图。本页为课件原图,图注为「透射电子显微镜TRANSMISSION ELECTRONMICROSCOPE,TEM」,对应显微技术部分的内容。

第30页:表二、不同光线的波长

表二、不同光线的波长

本页为课件中的表格原图,源文件未提取到表格数据,建议对照原课件图片补充表中内容。

第31页:2、制样技术

2、制样技术

  • 1)超薄切片
  • 电子束穿透力很弱,用于电镜观察的标本须制成厚度仅50nm的超薄切片,用超薄切片机(ultramicrotome)制作。
  • 通常以锇酸和戊二醛固定样品,丙酮逐级脱水,环氧树脂包埋,以热膨胀或螺旋推进的方式切片,重金属(铀、铅)盐染色。

第32页:

第33页:制样技术(续)

  • 2)负染技术
  • 用重金属盐(如磷钨酸)对铺展在载网上的样品染色;吸去染料,干燥后,样品凹陷处铺了一层重金属盐,而凸的出地方没有染料沉积,从而出现负染效果,分辨力可达1.5nm左右。Negative Stained Actin

第34页:制样技术(续2)

  • 3)冰冻蚀刻freeze-etching
  • 亦称冰冻断裂。标本置于干冰或液氮中冰冻。然后断开,升温后,冰升华,暴露出了断面结构。向断裂面上喷涂一层蒸汽碳和铂。然后将组织溶掉,把碳和铂的膜剥下来,此膜即为复膜(replica)。A Yeast Cell

第35页:(二)扫描电子显微镜

(二)扫描电子显微镜

  • 20世纪60年代问世,用来观察标本表面结构。
  • 分辨力为6~10nm,由于人眼的分辨力(区别荧光屏上距离最近两个光点的能力)为0.2mm,扫描电镜的有效放大倍率为0.2mm/10nm=20000X。

第36页:显微镜扫描电镜照片

显微镜扫描电镜照片。本页为课件原图,图注为「Scanning electron microscope(SEM)」,对应显微技术部分的内容。

第37页:工作原理

工作原理

  • 工作原理:是用一束极细的电子束扫描样品,在样品表面激发出次级电子,次级电子的多少与样品表面结构有关,次级电子由探测器收集,信号经放大用来调制荧光屏上电子束的强度,显示出与电子束同步的扫描图像。
  • 为了使标本表面发射出次级电子,标本在固定、脱水后,要喷涂上一层重金属膜,重金属在电子束的轰击下发出次级电子信号。

第38页:扫描电子显微镜原理

扫描电子显微镜原理

第39页:人类红细胞形态图

人类红细胞形态图。本页为课件原图,图注为「人类红细胞」,对应显微技术部分的内容。

第40页:酵母

本页为课件原图,图注为「酵母」,对应显微技术部分的内容。

第41页:人类精子形态图

人类精子形态图。本页为课件原图,图注为「人类精子」,对应显微技术部分的内容。

第42页:(三)扫描隧道显微镜

(三)扫描隧道显微镜

原理
根据隧道效应而设计,当原子尺度的针尖在不到一个纳米的高度上扫描样品时,此处电子云重叠,外加一电压(2mV~2V),针尖与样品之间形成隧道电流。电流强度与针尖和样品间的距离有函数关系,将扫描过程中电流的变化转换为图像,即可显示出原子水平的凹凸形态。
分辨率
横向为0.1~0.2nm,纵向可达0.001nm。
用途
三态(固态、液态和气态)物质均可进行观察。

第43页:扫描隧道显微镜原理

扫描隧道显微镜原理

第44页:扫描隧道显微镜图像

扫描隧道显微镜图像。本页为课件原图,图注为「STM image, Benzene molecules accumulate at step edges on Cu」,对应显微技术部分的内容。

第45页:三、显微操作技术

三、显微操作技术

  • 在倒置显微镜下利用显微操作器进行细胞或早期胚胎操作的一种方法。显微操作器是用以控制显微注射针在显微镜视野内移动的机械装置。
  • 显微操作技术包括细胞核移植、显微注射、嵌合体技术、胚胎移植以及显微切割等。
    • 细胞核移植技术已有几十年的历史,Gordon等人(1962)对非洲爪蟾进行核移植获得成功。我国著名学者童第周等上个世纪70年代在鱼类细胞核移植方面进行了许多工作,并取得了丰硕成果。

第46页:显微操作仪示意图

显微操作仪示意图。本页为课件原图,图注为「显微操作仪」,对应显微技术部分的内容。

第47页:第二节 生物化学与分子生物学技术

第二节 生物化学与分子生物学技术

第48页:生物化学与分子生物学技术(续)

  • 组织化学和细胞化学染色方法(histochemicalandcytochemicalstainingmethod)用于对某些细胞成分进行定性和定位研究。
  • (一)固定1.物理固定:血膜空气快速干燥、冷冻干燥。2.化学固定:如甲醇、乙醇、丙酮、甲醛、戊二醛和锇酸等试剂。显示多糖常用乙醇固定,显示酶类多用甲醛丙酮缓冲液固定。

第49页:(二)显示方法

(二)显示方法

第50页:二、免疫细胞化学

二、免疫细胞化学

  • 根据免疫学原理,利用抗体同特定抗原专一结合,对抗原进行定位测定的技术。常用的标记物有荧光素和酶。
  • 免疫荧光法(immunofluorescenttechnique):常用的萤光素有异硫氰酸荧光素、罗丹明等。
  • 酶标免疫法(enzyme-labeledantibodymethod):常用的酶有辣根过氧化物酶,酶与底物发生反应后形成不透明的沉积物,从而显示出抗原存在的部位。

第51页:三、显微光谱分析技术

三、显微光谱分析技术

  • 细胞中有一些成分具有特定的吸收光谱,核酸、蛋白质、细胞色素、维生素等都有自己特征性的吸收曲线。
  • 可利用显微分光光度计对某些成分进行定位、定性和定量测定。

第52页:四、放射自显影术

四、放射自显影术

  • 用于研究标记化合物在机体、组织和细胞中的分布、定位、排出以及合成、更新、作用机理、作用部位等等。
  • 原理:将放射性同位素标记的化合物导入生物体内,经过一段时间后,制取切片,涂上卤化银乳胶,经放射性曝光,使乳胶感光。
  • 一般用14C和3H标记。常用3H-TDR来显示DNA,用3H-UDR显示RNA;用3H氨基酸研究蛋白质,用3H甘露糖、3H岩藻糖研究多糖。
    • 14C半衰期为5730年,3H为12.5年。

第53页:五、分子杂交技术

五、分子杂交技术

  • 具有互补核苷酸序列的两条单链核苷酸分子片段,在适当条件下,通过氢键结合,形成DNA-DNA,DNA-RNA或RNA-RNA杂交的双链分子。这种技术可用来测定单链分子核苷酸序列间是否具有互补关系。
  • (一)原位杂交(insituhybridization)。
  • 用于检测染色体上的特殊DNA序列。最初是使用带放射性的DNA探针,后来又发明了免疫探针法。

第54页:分子杂交技术(续)

  • (二)Southern杂交
  • 是体外分析特异DNA序列的方法,操作时先用限制性内切酶将核DNA或线粒体DNA切成DNA片段,经凝胶电泳分离后,转移到醋酸纤维薄膜上,再用探针杂交,通过放射自显影,即可辨认出与探针互补的特殊核苷序列。
  • 将RNA转移到薄膜上,用探针杂交,则称为Northern杂交。

第55页:分子杂交技术(续2)

  • 六、PCR 技术
  • PCR即:polymerase chain reaction。
  • 反应体系:①样品DNA;②引物(primer),约15-20个核苷酸;③4种dNTP;④Tag DNA聚合酶,来自于嗜热水生菌Thermus aquaticus,最适作用温度75~80℃,短时间在95℃下不失活。⑤缓冲体系和Mg2+。
  • 反应过程:①变性:约90-95℃;②复性:约60℃左右;③延伸:70-75℃;④重复“变性——复性——延伸”过程20-30次循环。

第56页:PCR示意图

PCR示意图。本页为课件原图,图注为「PCR原理」,对应生物化学与分子生物学技术部分的内容。

第57页:第三节 细胞分离技术

第三节 细胞分离技术

第58页:一、离心技术

一、离心技术

  • 是分离细胞器(如细胞核、线粒体、高尔基体)及各种大分子基本手段。
  • 转速为10~25kr/min的离心机称为高速离心机。
  • 转速>25kr/min,离心力>89Kg者称为超速离心机。
  • 目前超速离心机的最高转速可达100000r/min,离心力超过500Kg。

第59页:(一)差速离心

(一)差速离心

  • 特点:
    • 介质密度均一;
    • 速度由低向高,逐级离心。
  • 用途:分离大小相差悬殊的细胞和细胞器。
  • 沉降顺序:核——线粒体——溶酶体与过氧化物酶体——内质网与高基体——核蛋白体。
  • 可将细胞器初步分离,常需进一步通过密度梯离心再行分离纯化。

第60页:离心示意图

离心示意图。本页为课件原图,图注为「Low speedHigh speedDifferential centrifugation」,对应细胞分离技术部分的内容。

第61页:(二)密度梯度离心

(二)密度梯度离心

  • 用介质在离心管内形成一连续或不连续的密度梯度,将细胞混悬液或匀浆置于介质的顶部,通过离心力场的作用使细胞分层、分离。
  • 类型:速度沉降、等密度沉降。
  • 常用介质:氯化铯、蔗糖、多聚蔗糖。
  • 分离活细胞的介质要求:
    • 1)能产生密度梯度,且密度高时,粘度不高;
    • 2)PH中性或易调为中性;
    • 3)浓度大时渗透压不大;
    • 4)对细胞无毒。

第62页:1、速度沉降

1、速度沉降

用途
分离密度相近而大小不等的细胞或细胞器。
特点
介质密度较低,介质的最大密度应小于被分离生物颗粒的最小密度。
原理
介质密度梯度平缓,分离物按各自的沉降系数以不同的速度沉降而达到分离。

第63页:2.等密度沉降

2.等密度沉降

用途
分离密度不等的颗粒。
特点
–介质密度较高,陡度大,介质的最高密度应大于被分离组分的最大密度。–所需的力场通常比速率沉降法大10~100倍,往往需要高速或超速离心。
原理
样品各成分在连续梯度的介质中经过一定时间的离心则沉降到与自身密度相等的介质处,并停留在那里达到平衡,从而将不同密度的成分分离。

第64页:沉降示意图

沉降示意图。本页为课件原图,图注为「Velocity (A) and Equilibrium (B) sedimentation」,对应细胞分离技术部分的内容。

第65页:二、流式细胞术

二、流式细胞术

用途
对单个细胞进行快速定量分析与分选的一门技术。
原理
包在鞘液中的细胞通过高频振荡控制的喷嘴,形成包含单个细胞的液滴,在激光束的照射下,这些细胞发出散射光和荧光,经探测器检测,转换为电信号,送入计算机处理,输出统计结果,并可根据这些性质分选出高纯度的细胞亚群,分离纯度可达99%。包被细胞的液流称为鞘液,所用仪器称为流式细胞计(flowcytometer)。

第66页:

第67页:三、细胞电泳

三、细胞电泳

  • 原理:在一定PH值下细胞表面带有净的正或负电荷,能在外加电场的作用下发生泳动。
  • 各种细胞或处于不同生理状态的同种细胞荷电量有所不同,故在一定的电场中的泳动速度不同。
  • 用途:检测细胞生理状态和病理状态、分离不同种类的细胞,如分离哺乳动物的XY精子。

第68页:第四节 细胞培养与细胞杂交

第四节 细胞培养与细胞杂交

第69页:(一)动物细胞培养

(一)动物细胞培养

  • 群体培养(massculture):将含有一定数量细胞的悬液置于培养瓶中,让细胞贴壁生长,汇合(confluence)后形成均匀的单细胞层;
  • 克隆培养(clonalculture):培养高度稀释的细胞悬液,细胞贴壁生长,每一个细胞形成一个细胞集落,称为克隆。
    • 转鼓培养法:为制取细胞产品而设计,大容量旋转培养,使培养的细胞始终处于悬浮状态之中。

第70页:动物细胞培养(续)

  • 原代培养(primaryculture):即:培养直接来自动物机体的细胞群,将细胞从一个培养瓶转移到另外一个培养瓶称为传代或传代培养(Passage)。
  • 细胞株(cellstrain):从原代培养细胞群中筛选出的具有特定性质或标志的细胞群。
  • 细胞系(cellline):从肿瘤组织培养建立的细胞群或培养过程中发生突变或转化的细胞,可无限繁殖。
  • 克隆(clone):亦称无性系。指由同一个祖先细胞通过有丝分裂产生的遗传性状一致的细胞群。

第71页:实验室中常用的几种细胞系

实验室中常用的几种细胞系

实验室中常用的几种细胞系
细胞系细胞类型来源
3T3成纤维细胞小鼠
HeLa宫颈癌上皮细胞Henrietta Lacks
BHK21成纤维细胞叙利亚仓鼠
PtK1上皮细胞袋鼠
L6成肌细胞大鼠
PC12嗜铬细胞大鼠
SP2浆细胞小鼠
SP2/0骨髓瘤浆细胞小鼠
CHO卵巢细胞中国地鼠

HeLa细胞来源于1951年因宫颈癌去世的美国黑人患者Henrietta Lacks;表中PtK1、PC12按通用写法补正。

第72页:(二)植物细胞培养

(二)植物细胞培养

第73页:培养示意图

培养示意图。本页为课件原图,图注为「Plant Cell CultureAnimal Cell Culture」,对应细胞培养与细胞杂交部分的内容。

第74页:二、细胞融合

二、细胞融合

  • 通过培养和介导,两个或多个细胞合并成一个双核或多核细胞的过程称为细胞融合(cellfusion)或细胞杂交。
  • 同核体:相同基因型的细胞融合而成。
  • 异核体:不同基因型的细胞融合而成。
  • 自发融合:同种细胞在培养过程中自发合并的现象。
  • 诱发融合:异种间的细胞必须经诱导剂处理才能融合。
  • 诱导细胞融合的方法:生物方法(仙台病毒、副流感病毒和新城鸡瘟病毒)、化学方法(聚乙二醇PEG)、物理方法(电击和激光)。

第75页:细胞融合(续)

  • 单克隆抗体技术
  • 正常淋巴细胞(如小鼠脾细胞)具有分泌抗体的能力,但不能长期培养,瘤细胞(如骨髓瘤)可以在体外长期培养,但不分泌抗体。于是英国人Kohler和Milstein1975将两种细胞杂交而创立了单克隆抗体技术,获1984年诺贝尔奖。
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