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06-2 实验六 酵母蔗糖酶的提取及纯化.docx

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本指导以新鲜啤酒酵母为原料,经石英砂研磨与甲苯自溶破碎细胞、50℃热处理、预冷乙醇沉淀获得粗级分至醇级分,用Nelson比色法测定还原糖生成量表征蔗糖酶活力,用考马斯亮蓝G-250结合法测定各级分蛋白浓度,进而计算比活力与回收率。

实验六讲义首页,说明蔗糖酶催化β-D-呋喃果糖苷键水解的相对专一性及常用提纯方法与仪器材料试剂
实验六讲义操作页,给出研磨破碎提取、离心分相、50℃热处理与预冷乙醇沉淀得到粗级分至醇级分的完整步骤
实验六讲义原理试剂页,说明Nelson法测还原糖与考马斯亮蓝法测蛋白的原理并列出试剂配方与蛋白标准曲线表
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第1页:蔗糖酶原理与提取准备

实验六 酵母蔗糖酶的提取及纯化

原理

  • 蔗糖酶(invertase,β—D—呋喃果糖苷果糖水解酶,EC.3.2.1.26)特异地催化非还原糖中的α—呋喃果糖苷键水解,具有相对专一性;不仅能催化蔗糖水解生成葡萄糖和果糖,也能催化棉子糖水解生成密二糖和果糖。每水解1mol蔗糖就生成2mol还原糖。
  • 还原糖的测定有多种方法,本实验采用Nelson比色法测定还原糖量,由此得知蔗糖水解的速度。
  • 酶的提纯常需盐析、有机溶剂沉淀、选择性变性、离子交换层析、凝胶过滤、亲和层析等多种方法交替应用;酶蛋白易变性失活,提纯操作中应始终在低温下操作以保持酶活性。
  • 啤酒酵母中蔗糖酶含量丰富,本实验用新鲜啤酒酵母为原料,经破碎细胞、热处理、乙醇沉淀、柱层析等步骤提取蔗糖酶并测定其性质。

一、蔗糖酶的提取与部分纯化

(一)实验目的
学习酶的提取和纯化方法,掌握各步骤的实验原理,并为后续实验提供一定量的蔗糖酶。
(三)实验仪器、材料及试剂 仪器
1.高速冷冻离心机、恒温水浴箱、-20℃冰箱;2.电子天平、研钵(>200mL)、制冰机、50mL烧杯;3.离心管(2mL,10mL,30mL或50mL)、移液器(1000μL)或滴管、量筒。
材料及试剂
4.市售鲜啤酒酵母(低温保存);5.石英砂(海沙)、甲苯(使用前预冷到0℃以下);6.95%乙醇(预冷-20℃)、去离子水(使用前冷至4℃左右);7.Tris-HCl(pH7.3)缓冲液。

(四)操作步骤 1. 提取蔗糖酶

第2页:提取、热处理与乙醇沉淀

  1. 将市售鲜啤酒酵母2000rpm离心10min,除去大量水分。
  2. 将研钵稳妥放入冰浴中。
  3. 称取50g鲜啤酒酵母,加30g石英砂放入研钵中,加50mL预冷的甲苯(边研边加)或预冷的去离子水研磨成糊状,然后每次缓慢加入预冷的10mL去离子水,边加边研磨使蔗糖酶充分转入水相;共加75mL去离子水,研磨约40~60分钟成糊状液体(可用显微镜检查研磨效果,至酵母细胞大部分研碎)。
  4. 将混合物转入50mL(或分装入2个30mL)离心管中,平衡后用高速冷冻离心机4℃、15000rpm离心15min;若中间白色脂肪层较厚,说明研磨效果良好。
  5. 吸出上层有机相(弃掉)。
  6. 小心取出脂肪层下面的水相液转入量筒,量出体积并记录。
  7. 取出2mL放入2mL离心管中(标记为粗级分I,-20℃保存),用于测定酶活力及蛋白含量;剩余部分转入清洁的小烧杯中。

2. 热处理

  1. 将盛有粗级分I的小烧杯迅速放入50℃恒温水浴中保持30分钟,并用玻璃棒温和搅动。
  2. 取出小烧杯迅速用冰浴冷却,转入清洁的离心管中,4℃、15000rpm离心15min。
  3. 将上清液转入量筒,量出体积并记录。
  4. 取出2mL放入2mL离心管中(标记为热级分II,-20℃保存),用于测定酶活力及蛋白含量;剩余部分转入清洁的小烧杯中。

3. 乙醇沉淀

  1. 将盛有热处理后上清液的小烧杯置于冰浴下,逐滴加入预冷的等体积95%乙醇,温和搅拌、放置1小时。
  2. 转入清洁的离心管中,4℃、15000rpm离心15min,倾去上清并滴干。
  3. 沉淀用5~8mL Tris-HCl(pH7.3)缓冲液充分溶解(若溶液混浊则4000rpm离心除去不溶物),转入量筒量出体积并记录。
  4. 取出2mL放入2mL离心管中(标记为醇级分Ⅲ,-20℃保存),用于测定酶活力及蛋白含量;剩余部分转入清洁的小烧杯中用于下一步实验。

(五)实验结果与分析:记录实验结果并加以解释,若有异常现象出现可进行分析讨论。

第3页:活力与浓度测定原理及试剂

二、蔗糖酶活性及蛋白质浓度的测定

(一)实验目的
学会用考马斯亮蓝结合法测定蛋白质浓度,用Nelson方法测定酶活力,掌握各步骤的实验原理和方法。
(二)实验原理
Nelson法:还原糖含有的自由醛基或酮基在碱性溶液中将Cu2+还原成氧化亚铜,糖本身被氧化成羟酸,砷钼酸试剂与氧化亚铜生成蓝色溶液,在510nm下有正比于还原糖的吸收,从而确定酶的活力,测定范围25~200μg。考马斯亮蓝法:G250能与蛋白质的疏水微区结合,其磷酸溶液呈棕红色、最大吸收峰在465nm,与蛋白质结合后呈蓝色、最大吸收峰变为595nm;一定范围内595nm吸光度与蛋白质含量呈线性关系,可用于蛋白质浓度测定。

(三)实验仪器、材料及试剂

  • 仪器:722型(或7220型)分光光度计、电子分析天平、恒温水浴箱、量筒、容量瓶、移液器、试管。
  • 考马斯亮蓝(G250)染液(0.01%):称取0.1g考马斯亮蓝G250溶于50mL 95%乙醇中,加入100mL浓磷酸(市售质量百分浓度为85%),加蒸馏水定容至1000mL。
  • 0.9% NaCl溶液。
  • 牛血清标准蛋白液(0.1mg/mL):准确称取牛血清蛋白0.1g,用0.9%NaCl溶液溶解并稀释至1000mL。
  • 4mmol/L葡萄糖、4mmol/L蔗糖、0.5mmol/L蔗糖。
  • 0.2mol/L乙酸缓冲溶液(pH4.5):0.2mol/L NaAC(27.616g定容至1000mL)与0.2mol/L HAC(100mL乙酸定容至500mL)分别取315mL、185mL混合,用强碱调pH到4.5。
  • Nelson试剂:A试剂每100mL含Na2CO3 2.5g、NaHCO3 2.0g、酒石酸钾钠2.5g、Na2SO4 20g;B试剂每100mL含CuSO4·5H2O 15g、浓H2SO4 2滴;以A︰B=50︰2混合使用,使用前需在37℃以上溶解防止溶质析出。
  • 砷钼酸试剂:每100mL含钼酸铵5g、浓H2SO4 4.2mL、砷酸钠0.6g(砷酸钠有毒,实验中注意)。

(四)操作步骤 1.各级分蛋白质浓度测定

表1 考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度——标准曲线的绘制
编号0123456
标准蛋白液(mL)—0.10.20.30.40.50.6
0.9% NaCl(mL)1.00.90.80.70.60.50.4
考马斯亮蓝(mL)4444444
蛋白含量(μg)0102030405060
测定室温静置5min,测A595nm室温静置5min,测A595nm室温静置5min,测A595nm室温静置5min,测A595nm室温静置5min,测A595nm室温静置5min,测A595nm室温静置5min,测A595nm

取7支干净试管按表编号加试剂混匀,以吸光度平均值为纵坐标、各管蛋白含量为横坐标作图得标准曲线(或代入线性回归方程求出回归式与相关系数)。

第4页:各级分蛋白与标准曲线

表2 各级分蛋白浓度的测定
编号12345678
粗级分I(mL)待测待测——————
热级分II(mL)——待测待测————
醇级分III(mL)————待测待测——
柱级分IV(mL)——————待测待测
0.9% NaCl(mL)补足至1.0补足至1.0补足至1.0补足至1.0补足至1.0补足至1.0补足至1.0补足至1.0
考马斯亮蓝(mL)44444444
测定室温静置5min,测A595nm并取平均值室温静置5min,测A595nm并取平均值室温静置5min,测A595nm并取平均值室温静置5min,测A595nm并取平均值室温静置5min,测A595nm并取平均值室温静置5min,测A595nm并取平均值室温静置5min,测A595nm并取平均值室温静置5min,测A595nm并取平均值

取9支干净试管,每级分做两管;各级分应进行一定倍数的稀释,先试做,选其吸光度值落在标准曲线内,即蛋白含量在10~80μg的稀释度为宜;以吸光度平均值查标准曲线求出蛋白质含量,再计算各级分蛋白浓度(mg/mL)。

2.各级分蔗糖酶活性的测定

表3 葡萄糖标准曲线的制作
编号012345678
4mmol/L葡萄糖(mL)—0.020.050.100.150.200.250.30—
蒸馏水(mL)1.20.980.950.900.850.800.750.701.0
葡萄糖量(μmol)00.080.20.40.60.81.01.20
Nelson试剂各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,置于沸水浴中20分钟,再冷至室温
砷钼酸试剂每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟每管加入1mL,5分钟
蒸馏水(mL)777777777
A510nm待测待测待测待测待测待测待测待测待测

取9支试管按表加样,以吸光度值(O.D.)为纵坐标、还原糖(葡萄糖含量,μmol)为横坐标作图得标准曲线;在碱性条件下糖被氧化,将Cu2+还原成氧化亚铜。

第5页:酶活性测定与计算

表4 各级分蔗糖酶活性测定
编号空白0粗级分I 1、2热级分II 1、2醇级分III 1、2柱级分IV 1、2
0.2mol/L乙酸缓冲液(mL)0.20.20.20.20.2
0.5mol/L蔗糖(mL)0.20.20.20.20.2
各级分酶液(mL)—0.20.20.20.2
反应室温10分钟室温10分钟室温10分钟室温10分钟室温10分钟
Nelson试剂各管加入1mL,盖上塞子,沸水浴20分钟后冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,沸水浴20分钟后冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,沸水浴20分钟后冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,沸水浴20分钟后冷至室温各管加入1mL,盖上塞子,沸水浴20分钟后冷至室温
砷钼酸试剂每管加入1mL,5分钟(与氧化亚铜生成蓝色溶液)每管加入1mL,5分钟(与氧化亚铜生成蓝色溶液)每管加入1mL,5分钟(与氧化亚铜生成蓝色溶液)每管加入1mL,5分钟(与氧化亚铜生成蓝色溶液)每管加入1mL,5分钟(与氧化亚铜生成蓝色溶液)
蒸馏水(mL)77777
A510nm调零待测(取平均)待测(取平均)待测(取平均)待测(取平均)

取9支干净试管分两组,每级分做两管;各级分酶液应进行一定倍数稀释,先试做,选其吸光度落在标准曲线内,即还原糖含量在0.08~1.2μmol的稀释度为宜;以吸光度平均值查标准曲线求出还原糖量。

(3)活力和比活力的计算:活力单位(U)指酶在室温、pH=4.5条件下每分钟水解产生1μmol葡萄糖所需酶量。根据测得结果计算各步数据填入下表:

各级分纯化计算结果表
样液体积(mL)蛋白(mg/mL)总蛋白(mg)活力(U)总活力(U)比活力(U/mg)提纯倍数回收率(%)
粗级分I待测待测待测待测待测待测1100
热级分II待测待测待测待测待测待测待测待测
醇级分III待测待测待测待测待测待测待测待测
柱级分IV待测待测待测待测待测待测待测待测

(五)实验结果与分析:记录实验结果并加以解释,若有异常现象可进行分析讨论。

(六)注意事项:砷酸钠有毒,Nelson与砷钼酸试剂操作时需注意防护;各级分应低温保存并避免反复冻融。

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