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09-1 实验九 Western_Blot鉴定目的蛋白.pptx

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本课件按SDS-PAGE分离、转膜、结合一抗二抗、显色四步讲解Western Blot原理,用预染Marker指示电泳与转膜位置,以鼠抗GST为一抗、HRP标记羊抗鼠IgG为二抗,DAB在过氧化氢存在下生成棕褐色不溶产物显色,从而鉴定GST-纤维素酶融合蛋白。

实验九Western Blot鉴定目的蛋白章节封面,标示本实验用免疫印迹技术鉴定目标蛋白
实验原理页,列出SDS-PAGE分离、转膜、结合一抗和二抗、显色四个步骤构成的Western Blot流程
SDS-PAGE原理图,说明蛋白质与SDS按1:1.4形成复合物消除电荷差异后迁移率只取决于分子大小
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第1页:Western Blot鉴定目的蛋白

实验九 Western Blot鉴定目的蛋白

第2页:Western Blot原理四步

实验原理:Western Blot由四步组成——

  1. SDS-PAGE:按分子量分离蛋白质。
  2. 转膜:将凝胶中的蛋白转移至固相膜上。
  3. 结合一抗和二抗:以特异性抗体识别靶蛋白。
  4. 显色:通过酶促显色反应显示靶蛋白位置。

第3页:SDS-PAGE原理

  • 蛋白质与SDS按1︰1.4比例形成复合物,消除了各种蛋白质分子之间原有的电荷差异。
  • 蛋白质的迁移速度只取决于分子大小。
  • 在15~200KD之间,蛋白质的迁移率和分子量的对数呈线性关系:logMW=K-bm。

第4页:预染Marker条带

预染Marker条带分子量(kD)
序号分子量(kD)
1170
2130
395
472
555
643
734
826
917
1010

预染Marker自带颜色,可作为电泳与转膜的直观指示。

第5页:Western Blotting 流程

Western Blotting:先以SDS-PAGE按分子量分离蛋白质,再将凝胶中的蛋白条带电转移至固相膜上,随后用特异性一抗与酶标二抗依次孵育,最后通过显色或化学发光显示靶蛋白的位置与含量。

第6页:转膜与抗体结合示意

转膜时将凝胶与固相膜(NC膜或PVDF膜)紧贴,两侧各垫滤纸,在电场作用下带负电的蛋白质由凝胶迁移并吸附在膜表面,形成与凝胶一致的蛋白印迹,供后续抗体孵育与显色。

第7页:DAB显色原理

显色原理:二氨基联苯胺(3,3'-diaminobenzidine,DAB)是过氧化物酶(Peroxidase)的生色底物,在过氧化氢的存在下失去电子而呈现出颜色变化和积累,形成棕褐色不溶性产物。

第8页:样品和抗体

  • 样品:大肠杆菌可溶蛋白(含GST-纤维素酶融合蛋白)。
  • 一抗:鼠抗GST抗体。
  • 二抗:辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG抗体。

第9页:实验步骤

实验步骤:SDS-PAGE → Western blotting转膜 → 杂交(封闭、一抗、二抗)→ 显色。

第10页:SDS-PAGE操作

  1. 洗净玻璃板,蒸馏水冲洗3遍,吹干并安装电泳槽(每班做4版胶,用2个电泳槽)。
  2. 制作12%分离胶。按下表所列顺序加试剂,轻轻摇匀,加入两块玻璃板间。
  3. 用1mL蒸馏水封住分离胶液面,室温聚合约15min,至分离胶与水之间出现一条清亮的分界线,倒掉水层,用滤纸条吸干残余的水。
  4. 配好浓缩胶(10mL),轻轻摇匀,加入浓缩胶,迅速插入样梳,静置约20分钟。
  • 水封的目的是为了使分离胶上沿平直,并排除气泡。
  • 凝胶聚合好的标志是胶与水层之间形成清晰的界面。
  • 样梳需一次平稳插入,梳口处不得有气泡,梳底需水平。

第11页:12%分离胶配方

12%分离胶配制
试剂名称加入量
ddH2O2.5mL
30% Acr-Bis(29:1)3.0mL
1.5M Tris-HCl(pH8.8)2.0mL
10% SDS75μL
TEMED(加速剂)10μL
10% APS(催化剂,最后加)75μL
总体积7.5mL

第12页:5%浓缩胶配方

5%浓缩胶配制
试剂名称加入量
ddH2O1.7mL
30% Acr-Bis(29:1)0.43mL
1M Tris-HCl(pH6.8)0.31mL
10% SDS25μL
TEMED(加速剂)10μL
10% AP(催化剂,最后加)25μL
总体积2.5mL

第13页:电泳与切胶

  1. 将胶板放入电泳槽,加入1×Tris-Gly电泳缓冲液,拔掉梳子,液面应该完全没过电极。
  2. 点样(待测蛋白样,加入样品缓冲液):每个点样孔点30μL样品,每板胶点5μL预染Marker(预染Marker是有颜色的,可以作为电泳和转膜的指示);加样前样品在沸水中加热3分钟,以除掉亚稳态聚合。
  3. 80V电泳20min,等蛋白进入分离胶后,将电压调节到120V,电泳2h。
  4. 溴酚蓝接近胶底部时关闭电源,电泳结束。
  5. 撬开玻璃板,根据预染Marker和溴酚蓝的位置切去浓缩胶和多余的分离胶(不要染色)。

第14页:Western blotting转膜

  1. 用尺量出胶的长度和宽度。
  2. 用裁纸刀裁出12张与胶大小一样的滤纸和1张同样大小的硝酸纤维素膜(NC膜)。
  3. 加10mL转膜缓冲液到培养皿中,将凝胶、NC膜、滤纸浸泡约5min。
  4. 将凝胶、NC膜、滤纸按照图示安装好。
  5. 20V电转移20~30分钟。

Western blotting转膜操作过程须戴手套。

第15页:

本页源文件未提取到文字内容,仅有图片(位于第14页转膜操作与第16页杂交操作之间)。建议对照原课件图片补充本页要点说明。

第16页:封闭与一抗二抗杂交

  1. 取出NC膜,放在一个干净的容器内,加入10mL封闭液,平缓摇动30min(封闭膜上非特异结合位点)。
  2. 回收封闭液,用10mL TTBS洗膜5min,重复3次(洗去过量的奶粉)。
  3. 加入一抗溶液(10mL),摇动30min(与抗原结合)。
  4. 回收一抗溶液,10mL TTBS洗膜5min,重复3次(一抗可以重复使用)。
  5. 加入二抗溶液(10mL),摇动30min(与一抗结合)。
  6. 回收二抗溶液,10mL TTBS洗膜5min,重复3次(二抗可重复使用)。

杂交:一抗和二抗溶液必须回收!!

第17页:显色操作

显色

  1. 倒掉TTBS,加入显色液,摇动显色3~5min。
  2. 倒掉显色液,用蒸馏水漂洗3~5min,晾干。

第18页:杂交结果图

杂交结果:9d、14d、19d、24d四个样品经显色后均在与预染Marker 109.7kD对应的位置出现GhCESA1杂交条带,Marker条带自上而下为250、130、95、72、55、36、28kD,说明目的蛋白在四个时期均有表达。

第19页:实验材料和试剂

实验材料和试剂:分为SDS-PAGE试剂与Western Blotting试剂两部分。

第20页:SDS-PAGE试剂

  1. 30%丙烯酰胺:29g丙烯酰胺、1g N,N'-亚甲基双丙烯酰胺,溶于60mL去离子水中,搅拌加热溶解后补水至终体积100mL;用滤纸过滤后避光4℃保存。
  2. 10% AP(过硫酸铵):0.1g AP溶于1mL蒸馏水,存放一周以后会失效。
  3. 10% SDS:5g SDS加水50mL。

第21页:SDS-PAGE缓冲液与上样缓冲液

  1. 1.5mol/L Tris(pH8.8):18.15g Tris溶于80mL去离子水中,调pH至8.8,定容至100mL。
  2. 1.5mol/L Tris(pH6.8):18.15g Tris碱溶于80mL去离子水中,调pH至6.8,定容至100mL。
  3. 5×SDS loading buffer:1mol/L Tris-HCl(pH6.8)12.5mL、SDS 5g、溴酚蓝0.25g、甘油25mL、H2O 12.5mL;使用前按上述配方配50mL总量,分装小管,每1mL buffer加50μL巯基乙醇。

第22页:转膜与TBS缓冲液

  1. 转膜缓冲液:Tris 3.0g、甘氨酸14.4g、3.7% SDS 10mL、甲醇200mL,加水至1L。
  2. 10×TBS缓冲液:Tris 12.1g、NaCl 87.7g溶于800mL单蒸水,调pH至8.0,加水至1L。
  3. TTBS缓冲液:100mL 1×TBS缓冲液中加入50μL Tween20。

第23页:封闭液与DAB显色液

  1. 封闭液:5g脱脂奶粉溶于100mL TTBS中。
  2. DAB/NiCl显色液:100mmol/L Tris-HCl(pH7.5)10mL、DAB储存液(40mg/mL)200μL、NiCl溶液(80mg/mL)50μL、30% H2O2 30μL。

第24页:一抗与二抗稀释

  1. 一抗(鼠抗GST)按1︰1000稀释:在15mL TTBS中加入15μL抗体。
  2. 二抗(辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG抗体)按照1︰5000稀释:15mL TTBS中加入3μL抗体。
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