第1页:Western Blot鉴定目的蛋白
实验九 Western Blot鉴定目的蛋白
第2页:Western Blot原理四步
实验原理:Western Blot由四步组成——
- SDS-PAGE:按分子量分离蛋白质。
- 转膜:将凝胶中的蛋白转移至固相膜上。
- 结合一抗和二抗:以特异性抗体识别靶蛋白。
- 显色:通过酶促显色反应显示靶蛋白位置。
第3页:SDS-PAGE原理
- 蛋白质与SDS按1︰1.4比例形成复合物,消除了各种蛋白质分子之间原有的电荷差异。
- 蛋白质的迁移速度只取决于分子大小。
- 在15~200KD之间,蛋白质的迁移率和分子量的对数呈线性关系:logMW=K-bm。
第4页:预染Marker条带
预染Marker条带分子量(kD)| 序号 | 分子量(kD) |
|---|
| 1 | 170 |
|---|
| 2 | 130 |
|---|
| 3 | 95 |
|---|
| 4 | 72 |
|---|
| 5 | 55 |
|---|
| 6 | 43 |
|---|
| 7 | 34 |
|---|
| 8 | 26 |
|---|
| 9 | 17 |
|---|
| 10 | 10 |
|---|
预染Marker自带颜色,可作为电泳与转膜的直观指示。
第5页:Western Blotting 流程
Western Blotting:先以SDS-PAGE按分子量分离蛋白质,再将凝胶中的蛋白条带电转移至固相膜上,随后用特异性一抗与酶标二抗依次孵育,最后通过显色或化学发光显示靶蛋白的位置与含量。
第6页:转膜与抗体结合示意
转膜时将凝胶与固相膜(NC膜或PVDF膜)紧贴,两侧各垫滤纸,在电场作用下带负电的蛋白质由凝胶迁移并吸附在膜表面,形成与凝胶一致的蛋白印迹,供后续抗体孵育与显色。
第7页:DAB显色原理
显色原理:二氨基联苯胺(3,3'-diaminobenzidine,DAB)是过氧化物酶(Peroxidase)的生色底物,在过氧化氢的存在下失去电子而呈现出颜色变化和积累,形成棕褐色不溶性产物。
第8页:样品和抗体
- 样品:大肠杆菌可溶蛋白(含GST-纤维素酶融合蛋白)。
- 一抗:鼠抗GST抗体。
- 二抗:辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG抗体。
第9页:实验步骤
实验步骤:SDS-PAGE → Western blotting转膜 → 杂交(封闭、一抗、二抗)→ 显色。
第10页:SDS-PAGE操作
- 洗净玻璃板,蒸馏水冲洗3遍,吹干并安装电泳槽(每班做4版胶,用2个电泳槽)。
- 制作12%分离胶。按下表所列顺序加试剂,轻轻摇匀,加入两块玻璃板间。
- 用1mL蒸馏水封住分离胶液面,室温聚合约15min,至分离胶与水之间出现一条清亮的分界线,倒掉水层,用滤纸条吸干残余的水。
- 配好浓缩胶(10mL),轻轻摇匀,加入浓缩胶,迅速插入样梳,静置约20分钟。
- 水封的目的是为了使分离胶上沿平直,并排除气泡。
- 凝胶聚合好的标志是胶与水层之间形成清晰的界面。
- 样梳需一次平稳插入,梳口处不得有气泡,梳底需水平。
第11页:12%分离胶配方
12%分离胶配制| 试剂名称 | 加入量 |
|---|
| ddH2O | 2.5mL |
|---|
| 30% Acr-Bis(29:1) | 3.0mL |
|---|
| 1.5M Tris-HCl(pH8.8) | 2.0mL |
|---|
| 10% SDS | 75μL |
|---|
| TEMED(加速剂) | 10μL |
|---|
| 10% APS(催化剂,最后加) | 75μL |
|---|
| 总体积 | 7.5mL |
|---|
第12页:5%浓缩胶配方
5%浓缩胶配制| 试剂名称 | 加入量 |
|---|
| ddH2O | 1.7mL |
|---|
| 30% Acr-Bis(29:1) | 0.43mL |
|---|
| 1M Tris-HCl(pH6.8) | 0.31mL |
|---|
| 10% SDS | 25μL |
|---|
| TEMED(加速剂) | 10μL |
|---|
| 10% AP(催化剂,最后加) | 25μL |
|---|
| 总体积 | 2.5mL |
|---|
第13页:电泳与切胶
- 将胶板放入电泳槽,加入1×Tris-Gly电泳缓冲液,拔掉梳子,液面应该完全没过电极。
- 点样(待测蛋白样,加入样品缓冲液):每个点样孔点30μL样品,每板胶点5μL预染Marker(预染Marker是有颜色的,可以作为电泳和转膜的指示);加样前样品在沸水中加热3分钟,以除掉亚稳态聚合。
- 80V电泳20min,等蛋白进入分离胶后,将电压调节到120V,电泳2h。
- 溴酚蓝接近胶底部时关闭电源,电泳结束。
- 撬开玻璃板,根据预染Marker和溴酚蓝的位置切去浓缩胶和多余的分离胶(不要染色)。
第14页:Western blotting转膜
- 用尺量出胶的长度和宽度。
- 用裁纸刀裁出12张与胶大小一样的滤纸和1张同样大小的硝酸纤维素膜(NC膜)。
- 加10mL转膜缓冲液到培养皿中,将凝胶、NC膜、滤纸浸泡约5min。
- 将凝胶、NC膜、滤纸按照图示安装好。
- 20V电转移20~30分钟。
Western blotting转膜操作过程须戴手套。
第15页:
本页源文件未提取到文字内容,仅有图片(位于第14页转膜操作与第16页杂交操作之间)。建议对照原课件图片补充本页要点说明。
第16页:封闭与一抗二抗杂交
- 取出NC膜,放在一个干净的容器内,加入10mL封闭液,平缓摇动30min(封闭膜上非特异结合位点)。
- 回收封闭液,用10mL TTBS洗膜5min,重复3次(洗去过量的奶粉)。
- 加入一抗溶液(10mL),摇动30min(与抗原结合)。
- 回收一抗溶液,10mL TTBS洗膜5min,重复3次(一抗可以重复使用)。
- 加入二抗溶液(10mL),摇动30min(与一抗结合)。
- 回收二抗溶液,10mL TTBS洗膜5min,重复3次(二抗可重复使用)。
杂交:一抗和二抗溶液必须回收!!
第17页:显色操作
显色
- 倒掉TTBS,加入显色液,摇动显色3~5min。
- 倒掉显色液,用蒸馏水漂洗3~5min,晾干。
第18页:杂交结果图
杂交结果:9d、14d、19d、24d四个样品经显色后均在与预染Marker 109.7kD对应的位置出现GhCESA1杂交条带,Marker条带自上而下为250、130、95、72、55、36、28kD,说明目的蛋白在四个时期均有表达。
第19页:实验材料和试剂
实验材料和试剂:分为SDS-PAGE试剂与Western Blotting试剂两部分。
第20页:SDS-PAGE试剂
- 30%丙烯酰胺:29g丙烯酰胺、1g N,N'-亚甲基双丙烯酰胺,溶于60mL去离子水中,搅拌加热溶解后补水至终体积100mL;用滤纸过滤后避光4℃保存。
- 10% AP(过硫酸铵):0.1g AP溶于1mL蒸馏水,存放一周以后会失效。
- 10% SDS:5g SDS加水50mL。
第21页:SDS-PAGE缓冲液与上样缓冲液
- 1.5mol/L Tris(pH8.8):18.15g Tris溶于80mL去离子水中,调pH至8.8,定容至100mL。
- 1.5mol/L Tris(pH6.8):18.15g Tris碱溶于80mL去离子水中,调pH至6.8,定容至100mL。
- 5×SDS loading buffer:1mol/L Tris-HCl(pH6.8)12.5mL、SDS 5g、溴酚蓝0.25g、甘油25mL、H2O 12.5mL;使用前按上述配方配50mL总量,分装小管,每1mL buffer加50μL巯基乙醇。
第22页:转膜与TBS缓冲液
- 转膜缓冲液:Tris 3.0g、甘氨酸14.4g、3.7% SDS 10mL、甲醇200mL,加水至1L。
- 10×TBS缓冲液:Tris 12.1g、NaCl 87.7g溶于800mL单蒸水,调pH至8.0,加水至1L。
- TTBS缓冲液:100mL 1×TBS缓冲液中加入50μL Tween20。
第23页:封闭液与DAB显色液
- 封闭液:5g脱脂奶粉溶于100mL TTBS中。
- DAB/NiCl显色液:100mmol/L Tris-HCl(pH7.5)10mL、DAB储存液(40mg/mL)200μL、NiCl溶液(80mg/mL)50μL、30% H2O2 30μL。
第24页:一抗与二抗稀释
- 一抗(鼠抗GST)按1︰1000稀释:在15mL TTBS中加入15μL抗体。
- 二抗(辣根过氧化物酶标记的羊抗鼠IgG抗体)按照1︰5000稀释:15mL TTBS中加入3μL抗体。