页数:21页文件大小:103.8 KB来源: 生物化学实验ppt课件
本课件介绍限制性内切酶识别双链DNA特异位点并切开的原理,列出EcoR I与Hind III的识别序列与37℃、pH7.5~8.0反应条件;说明琼脂糖浓度与DNA分离范围对应关系,并给出酶切体系、制胶、点样、150V电泳、EB染色与紫外观察的完整流程。
实验五 DNA限制性酶切和琼脂糖凝胶电泳
限制性内切酶:能够识别双链DNA上的特定位点并切开DNA,是基因操作不可缺少的工具酶。
EcoR I Restriction Enzyme:识别序列为
------G↓AATT C------
------C TTAA↓G------
即在G与A之间切开,产生互补的黏性末端。
Hind III Restriction Enzyme:识别序列为
------A↓AGCT T------
------T TCGA↓A------
即在第一个A与第二个A之间切开,产生互补的黏性末端。
每一种限制性内切酶都有特定的反应条件:
琼脂糖凝胶电泳是一种简便、快速的分离纯化和鉴定核酸的方法。琼脂糖是一种线性多糖聚合物,琼脂糖粉末加热到熔点后冷却凝固,会形成良好的电泳介质。
电泳:在电场的作用下,在某种支持介质上,将一个混合物分离成若干条区带的过程。
| 琼脂糖浓度(%) | 线型DNA分离范围(Kb) |
|---|---|
| 0.3 | 5~60 |
| 0.6 | 1~20 |
| 0.7 | 0.8~10 |
| 0.9 | 0.5~7 |
| 1.2 | 0.9~6 |
| 1.5 | 0.2~3 |
| 2.0 | 0.1~2 |
原文浓度数值与分离范围分行排列,此处已按浓度由低到高的对应关系还原为两列。
操作步骤:酶切反应→制胶→点样→电泳→染色和观察。
| 组分 | 体积 |
|---|---|
| λ-DNA | 5μL |
| 10×Buffer | 2μL |
| Hind III | 3μL |
| H2O | 10μL |
| Total | 20μL |
| 反应条件 | 混匀,37℃保温30分钟 |
| 样品 | 组成 | 点样量 |
|---|---|---|
| Sample 1 | 自提DNA 5μL+2μL Loading Dye | 7μL |
| Sample 2 | 自提DNA酶切液 20μL+4μL Loading Dye | 10μL |
| Sample 3 | λ-DNA 5μL+2μL Loading Dye | 7μL |
| Sample 4 | λ-DNA酶切液 20μL+4μL Loading Dye | 10μL |
电泳:接通电源,150V电泳0.5小时。
警告
电泳结果示意(泳道1→4):1 自提DNA;2 自提DNA/Hind III;3 λ-DNA/Hind III;4 λ-DNA。凝胶前方可见RNA条带,提示样品中残留RNA。
结果记录与分析:绘制电泳图谱,记录各泳道DNA条带的位置与数目。
| 片段序号 | 片段大小(bp) |
|---|---|
| 1 | 23130 |
| 2 | 9416 |
| 3 | 6557 |
| 4 | 4361 |
| 5 | 2322 |
| 6 | 2027 |
原文片段数值连写为「23130 9416 6557 4361 2322 2027」,此处按λ-DNA/Hind Ⅲ标准片段大小拆分并按由大到小排列。
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