78 实验八 家兔动脉血压的神经、体液调节.ppt

第1页：动物生理实验模块实验八家兔动脉血压的神经

动物生理实验模块实验八家兔动脉血压的神经、体液调节

第2页：一、实验目的

一、实验目的1.学习直接测定家兔动脉血压的急性实验方法；直接测定法：实时跟踪过程变化；间接测定法：滞后——人2．观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响。

第3页：二、原理

• 二、原理
• 高等动物的动脉血压相对稳定，
• 通过神经、体液因素的调节而实现。

第4页：三、试剂与器材

• 三、试剂与器材
• 微机、生物信号处理系统、压力换能器、刺激输出线、保护电极
• 兔
• 兔体手术台、圆头手术镊、尖头手术镊、手术剪、弯剪、手术刀、止血钳、眼科剪、气管插管、玻璃勾针、20 mL注射器、针头、5 mL注射器（2支）、动脉夹、20%氨基甲酸乙酯、棉花、棉线、5%柠檬酸钠、肾上腺素（1:10,000）、乙酰胆碱（1:10,000）

第5页：实验基本程序：麻醉－气管切开术

实验基本程序：麻醉－气管切开术－颈部神经分离术－动脉插管术－连接实验装置－实验观察。

第6页：四、实验内容

四、实验内容（步骤）（一）手术过程1．术前准备；2．气管插管术；3．分离一侧的迷走神经；4.分离两侧颈动脉；5.动脉插管术.（二）连接实验装置

第7页：压力换能器的用法

• 压力换能器的用法
• 液体传导压力变化
• 5%柠檬酸钠：传导介质；抗凝
• 三通管：只有1个方向不通，其余3个方向互通。
• 灌注传导液充满整个系统，驱净气体：
• 检查各个接点是否漏液—否则血倒灌而堵塞系统；
• 推进后用手指堵住插管接口施加压力以检查是否漏液。
• 有机玻璃——小心操作
• 麻醉液、抗凝剂分置两处，勿混淆；同一个针筒

第8页：

第9页：如果漏液—续灌传导液

• 如果漏液—续灌传导液
• 先用注射器堵住，
• 再打开开关；
• 用力缓慢、匀力
• 将血液赶回血管

第10页：

第11页：动脉插管术颈动脉——钝性分离

动脉插管术颈动脉——钝性分离，肉色迷走神经——玻璃钩针颈静脉——皮下、黑色

第12页：图1颈动脉分离示意图

图1颈动脉分离示意图

第13页：图2颈动脉插管术准备示意图颈动脉上下封闭

图2颈动脉插管术准备示意图颈动脉上下封闭间距要长点，便于插管及固定

第14页：图3固定颈动脉插管

图3固定颈动脉插管

第15页：图4操作完毕的颈动脉插管死结绑住插管后

图4操作完毕的颈动脉插管死结绑住插管后，将线固定于胶布处-防止脱落

第16页：松开动脉夹

• 松开动脉夹：
• 血液仅倒流少许，且分界面搏动—插管成功
• 不搏动——血液凝固；未插入血管腔
• 一直倒流——换能器接点漏液
• 专人照看

第17页：（三）实验观察

• （三）实验观察
• 夹闭另一侧颈总动脉未插管的一侧
• 刺激另一侧迷走神经
• 注射肾上腺素5 ml注射器不能过量，迟恢复
• 注射乙酰胆碱5 ml注射器

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第19页：五、注意事项

五、注意事项1．要熟练掌握三通的使用方法。插进颈动脉之前要确认整个换能器的各个接点密封良好。2．一项实验后，须持血压基本恢复后再进行下一项实验。3．随时注意动脉套管的位置，特别是动物挣扎时，避免扭转插管阻塞血流或戳穿血管。4．刺激神经之前，应先检查是否有刺激电流输出。5．神经需刺激时才拉出，不要一直由保护电极勾住，防止神经干燥。

第20页：六、实验结果

• 六、结果和目标
• 观察并记录正常血压的波动曲线，
• 掌握其特性和规律；
• 观察并记录各种影响因素对血压的影响。

第21页：七、思考题

• 七、思考题
• 分析每一实验观察项目引起血压变化的机制。